公司產品僅供科研研究使用、不得用于臨床診斷！

保存條件：常溫運輸，室溫或者 4℃可保存 6 個月。
產品介紹：
植物助提劑 PLANTaid 是針對植物 RNA 提取時，針對富含多糖多酚等不容易清除的特點設計的一種多糖多酚植物 RNA 提取的輔助劑，主要成份為聚乙烯吡咯烷酮等高分子化合物。它們可以和多糖多酚等雜質結合，通過離心去除。它和絕大多數常用的使用高離序鹽（chaotropic salts ）如異硫氰酸胍的 RNA 提取方法兼容。使用方法簡便，只要在正常的 RNA 提取步驟中加一步驟即可。將 PLANTaid 加入裂解液后，研磨，勻漿，PLANTaid 和多糖多酚等雜質結合，離心將 PLANTaid，多糖多酚和任何不溶解的雜質去除,取上清就可以繼續(xù)后面的正常RNA 提取步驟。
注意事項：
1.PLANTaid使用過量可能降低RNA產量，由于不同植物中所含多糖，多酚量變異性很大，因此最佳用量應該在實驗中適當調整。
2.如果處理的植物量特別少，按照下面比例計算所需裂解液＋PLANTaid 總體積少于200μl的情況下應該使用不少于200μl的總體積
來提取植物RNA，具體為175μl裂解液＋25μl PLANTaid= 200μl。
使用方法：
1.估計待處理植物體積的方法，我們按照100mg/100μl的比例來估計待處理植物體積。
2.查看使用的RNA提取手冊（方法）的裂解液和植物處理量之間的比例
如果裂解液：植物處理量（體積比）≤9:1,則在所需裂解液中加入九分之一裂解液體積的PLANTaid;
如果裂解液：植物處理量（體積比）>9:1,則在所需裂解液中加入和植物處理量等體積的PLANTaid。
3.舉例說明：
1）如果RNA提取手冊上面裂解液：植物處理量=5:1,植物處理量為100mg(我們認為體積為100μl)，所需裂解液為100μl×5= 500μl，
再加入500μl×1/9＝55.6μl的PLANTaid. 2）如果RNA提取手冊上面裂解液：植物處理量=10:1, 植物處理量為100mg(我們認為體積為100μl)，所需裂解液為100μl×10 = 1000μl，再加入100μl即和植物處理量等體積的PLANTaid。
3）使用上面的混和液按照正常操作步驟研磨，勻漿處理后，將裂解物用最高速（12000-14000rpm）室溫下離心5 sec。不溶的細胞碎片，PLANTaid和它結合的多糖多酚等雜質可以通過此離心步驟去除。

PCR 反應需要使用哪些試劑和設備？

試劑:
模板DNA：PCR反應需要模板DNA，如從細胞、組織、血液中提取DNA等；引物：PCR反應的兩個引物，分別與模板DNA的兩端配對擴增所需的特定區(qū)域，引物也可以合成為TA克隆等過程中使用到的引物；dNTPs：PCR反應中需要四種dNTPs，包括脫氧腺苷酸（dATP）、脫氧胸苷酸（dCTP）、脫氧鳥苷酸（dGTP）、脫氧胞嘧啶酸（dTTP），用于細胞分裂、DNA合成等生物學過程，用于PCR擴增的模板DNA鏈的延伸和擴增；Taq DNA聚合酶：PCR反應需要的聚合酶，一般使用Taq聚合酶，還有一些其他種類的聚合酶如PFU、Phusion等，用于擴增DNA鏈；PCR buffer溶液：對PCR反應具有緩沖作用，調節(jié)反應pH，硫代硫酸氫鹽SDS、小分子有機化合物如甲醛，可增強PCR反應特異性，從而提高反應效率；酶切體系：PCR擴增往往涉及到重組、構建和測序等等實驗步驟，常常需要進行酶切操作。MARK:一種分子量標準，用來判別DNA片段大小的工具。DNA純化試劑盒：用于純化PCR反應產物；
設備：
PCR儀：用于控制反應溫度，保證PCR反應時不同溫度環(huán)節(jié)的嚴格控制；電泳槽：用于分離PCR擴增產物；核酸提取儀：從組織樣本中全自動提取核酸。 這些試劑和設備在PCR分子生物學技術中均是，只有在有序齊全的基礎上，才能進行PCR反應并得出準確結果。

PCR相關基礎實驗：

PCR反應基本步驟一般的聚合酶鏈式反應由20到35個循環(huán)組成，每個循環(huán)包括以下3個步驟：

一、變性：

利用高溫（93-98℃）使雙鏈DNA分離。高溫將連接兩條DNA鏈的氫鍵打斷。在第一個循環(huán)之前，通常加熱長一些時間以確保模板和引物分離，僅以單鏈形式存在。該步驟時間1-2分鐘，接下來PCR儀就控制溫度進入循環(huán)階段。

二、退火或稱接合,復性：

在DNA雙鏈分離后，降低溫度使得引物可以結合于單鏈DNA上。此階段的溫度通常低于引物熔點5℃。錯誤的退火溫度可能導致引物不與模板結合或者錯誤地結合。該步驟時間1-2分鐘。

三、延伸：

DNA聚合酶由降溫時結合上的引物開始沿著DNA鏈合成互補鏈。此階段的溫度依賴于DNA聚合酶。該步驟時間依賴于聚合酶以及需要合成的DNA片段長度。傳統(tǒng)的Taq估計合成1000bp/min、較新的Tbr（來自于嗜熱菌Thermus brockianus）約40秒、商業(yè)公司生產的融合型聚合酶僅需約10-15秒。

PCR反應條件優(yōu)化：

1、變性溫度和時間：

保證模板DNA解鏈是保證整個PCR擴增成功的關鍵。加熱90~95°C, 30~60s，再復雜的DNA 分子也可變性為單鏈。溫度過高或高溫持續(xù)時間過長，可對Taq酶活性和dNTP分子造成損害。

2、復性溫度和時間:

PCR擴增特異性取決于復性過程中引物與模板的結合。復性溫度越高，產物特異性越高。復性溫度越低，產物特異性越低。需根據引物的Tm值具體設定。

3、延伸溫度和時間:

一般位于Taq酶最適作用溫度70~75°C之間。引物小于16個核苷酸時，過高的延伸溫度不利于引物與模板的結合，可以緩慢升溫到70~75°C。延伸反應時間，可根據待擴增片段的長度而定，小于1kb, 1min足夠；大于1kb需加長延伸時間。Taq酶可根據1kb/min增加時間。這里需要注意，延伸時間過長可能出現非特異擴增。因此需要設置恰到好處的延伸時間。

4、循環(huán)數:

其他參數選定后，PCR循環(huán)次數主要取決于模板DNA的濃度。理論上說20?25次循環(huán)后，PCR產物的積累即可達到最大值，實際操作中由于每步反應的產率不可能達到100%，因此不管模板濃度是多少，20~30次是比較合理的循環(huán)次數。循環(huán)次數越多，非特異擴增增加。

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