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詳細(xì)解答逆轉(zhuǎn)錄操作過(guò)程中問(wèn)題
點(diǎn)擊次數(shù):1239 更新時(shí)間:2022-10-17

逆轉(zhuǎn)錄(reverse transcription)是以 RNA 為模板合成 DNA 的過(guò)程,即 RNA 指導(dǎo)下的 DNA 合成。在實(shí)際的操作過(guò)程中,還會(huì)有各種問(wèn)題,現(xiàn)做詳細(xì)解答!

1. 如何提高 RT-PCR 反應(yīng)的靈敏度與特異性?

① 確定模板 RNA 完整性好,無(wú) DNA 污染。

② RNA 模板中不應(yīng)含有擴(kuò)增反應(yīng)抑制劑。

③ 使用適量的模板 RNA ,模板量太多會(huì)降低特異性,太少會(huì)導(dǎo)致擴(kuò)增不出條帶或條帶太弱。

④ 若模板中有二級(jí)結(jié)構(gòu),可通過(guò)提高逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)溫度來(lái)提高擴(kuò)增效果。


2.  RNA 中含有逆轉(zhuǎn)錄抑制劑時(shí),怎么處理?

逆轉(zhuǎn)錄抑制劑包括:SDS 、EDTA 、甘油、焦磷酸鈉、亞精胺和胍鹽等等。可將已確定的高質(zhì)量 RNA 模板同樣品混合,同高質(zhì)量 RNA 模板比較產(chǎn)量以檢測(cè) RNA 抑制劑;若高質(zhì)量模板 RNA 與樣品混合后產(chǎn)量降低,則說(shuō)明樣品中存在逆轉(zhuǎn)錄抑制劑,可用70%(v/v)乙醇對(duì) RNA 沉淀進(jìn)行清洗,以除去抑制劑。


3. 逆轉(zhuǎn)錄后的 qPCR 實(shí)驗(yàn) Ct 值偏大或者普通 PCR 產(chǎn)量低。

① RNA 模板質(zhì)量差,需要重新制備 RNA 模板,可通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)質(zhì)量。

② 逆轉(zhuǎn)錄后的 cDNA 中含有高濃度的模板 RNA 和逆轉(zhuǎn)錄試劑成分,可能會(huì)對(duì)后續(xù)的PCR 產(chǎn)生抑制作用,所以可以適當(dāng)梯度提高 cDNA 稀釋比例(通常來(lái)說(shuō)可將 cDNA 原液稀釋5-10倍,其最佳模板加入量以擴(kuò)增得到的 Ct 值在20-30個(gè)循環(huán)為好)。

③ 起始的 RNA 模板量低,需要減少稀釋倍數(shù)或增加 RNA 模板量。

④ 基因本身原因(復(fù)雜和長(zhǎng)度),可以重新設(shè)計(jì)復(fù)雜基因的引物,避免復(fù)雜結(jié)構(gòu)?;蛘哂萌椒ǔ绦蚧蜓娱L(zhǎng)兩步法程序的延伸時(shí)間。

⑤ 逆轉(zhuǎn)錄或者定量產(chǎn)品性能差,可以通過(guò)做平行不用品牌產(chǎn)品對(duì)比實(shí)驗(yàn),對(duì)比逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)品性能。


4. 逆轉(zhuǎn)錄酶擴(kuò)增效率評(píng)估,應(yīng)該關(guān)注哪些指標(biāo)?

建議: qPCR-ct 值,或者 PCR 產(chǎn)量

如果想比較逆轉(zhuǎn)錄性能,最為直接的還是后續(xù)做 qPCR 或者 PCR 平行對(duì)比實(shí)驗(yàn),這種方法相對(duì)較為準(zhǔn)確。

不建議:cDNA 中間產(chǎn)物濃度測(cè)定 or 其他方法。

逆轉(zhuǎn)錄完成后是不建議測(cè)定產(chǎn)物濃度的,由于逆轉(zhuǎn)錄后產(chǎn)生 RNA-cDNA 雜交鏈,溶液中的 RNA 和部分 DNA 會(huì)對(duì)吸光值產(chǎn)生影響,所以測(cè)定出來(lái)的產(chǎn)物濃度并不準(zhǔn)確,即使利用同一批次 RNA 和不同品牌的試劑盒進(jìn)行對(duì)比實(shí)驗(yàn),由于不同品牌之間的逆轉(zhuǎn)錄體系具有或多或少的差異,其體系中的各種離子等都能對(duì)吸光度產(chǎn)生影響,所以測(cè)定的結(jié)果也沒(méi)有可比性。


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